El desorden que conlleva tener niveles bajos de B9 durante el embarazo

divendres, 17 de desembre del 2010

pràctica 6

1.Objectius


Identificar la forma i el tipus de paret dels microorganismes d'una colònia separada a través de de la tinció de gram


2.Introducció


Hans Christian Gram (Copenhague, 1853-1938) fou un microbiòleg i metge danès, que va va desenvolupar la tinció de Gram a Copenhague, va ser professor de patologia i terapèutica a la universitat de Copenhague.


Gràcies al progres d'aquesta investigació permet diferenciar la forma cel·lular dels bacteris, a més es el primer pas per a la diferenciació bacteriana , on es poden classificar un parell de grups amb significat taxonòmic depenen de la seva resposta;

  • Gramnegatiu; són bacteris que no reten el cristall de violeta en la tinció de Gram, i per tan manifesten el color rosat. Majoritàriament dels bacteris són patogènics.

    A més presenten un parell de membranes lipídiques amb una paret cel·lular de peptidoglicà i aquest es el motiu que reté el colorant, i a més són molt absorbents a la solució decolorant.

  • Grampositiu; bacteris què retenen el cristall violeta durant el procés de tinció Gram, aquesta característica esta lligada a l'estructura de la envoltura cel·lular, per tant refleja un tipus natural d'organització bacteriana.

Diverses especies bacterianes poden presentar alhora cèl·lules de Gramnegatiu i Grampositiu.

A més emprar cultius antics pot donar respostes inadequades, i aquest fet pot causar un excessiu agrupament de les cèl·lules.

      1. Material

  • Portaobjectes

  • Microscopi

  • Oli d'immersió

  • Pipetes Pasteur

  • Guants

  • Solució salina fisiològica

  • Encenedor

  • Bec Bunsen

  • Paper secant especial

  • Alcohol d'acetona

  • Solució de lugol

  • Aigua

  • Blau Violeta

  • Safrina

  • Nansa de Kolle

  • Fucsina

  • Xeringa

  • Gradeta





      1. Procediment

Per poder fer aquesta practica em de tenir a la taula de feina tots els materials que posteriorment s'han anomenat.

Posar el paper secant especial a sobre de la taula de feina. El primer pas es, netejar els portaobjectes amb aigua i sabó i després amb alcohol perquè quedi desengreixat, s'ha d'eixugar fins que no quedi humitat.


Al portaobjectes s'ha de posar el propi nom a la zona esmerilada per saber durant el protocol de la tinció, quina és la part superior i quina l'inferior.

Un cop esterilitzat la nansa de Kolle amb el bec Bunsen s'agafa una colònia de la placa de petri què prèviament s'havia mostrejat, la cantonada de la paret de microbiologia.

És col·loca a sobre del portaobjectes una gota de la solució fisiològica salina, ja què facilita el desenvolupament, amb l'ajuda d'una xeringa, em de tenir en compte que la gota de la solució no ha de ser ni gran ni petita, ha de tenir un tamany més o menys mitjà. A sobre de la superfície del portaobjectes en la zona què havíem dipositat la petita quantitat de la solució fisiològica salina dispersarem la colònia amb un moviment circulatori. El material què s'ha col·locat en el portaobjectes és deixà què és sequi al aire lliure o bé és fixa el material amb la calor de la flama posant-lo varies vegades per la zona blava de la flama del bec Bunsen , fins que el vidre estigui tan calent què molesti al tacte, però que no quemi.


Es col·loca el portaobjectes en el suport de tinció per a què es refredi el portaobjectes i torni a estar a la seva temperatura ambient.

Un cop fixada la cèl·lula a sobre del portaobjectes es tenyeixen;


  • Primer es cobreix la preparació amb una solució de cristall violeta i es deixa en repòs durant un minut, i després es renten per poder treure l'excés de colorant.

    En aquest estat, totes les cèl·lules, tant com les grampositives com les gramnegatives, estan tenyides de color blau.

  • Es duu a terme després la decoloració, es renta la preparació amb aigua, però s'ha de tenir en compta que l'aigua que ha de caure l'aigua a sobre la part superior de làmina, que no conte la mostra.

  • Es cobreix el portaobjectes amb la solució lugol ( solució de iode molecular) i deixar-ho en repòs durant un minut. Aquesta solució actua com mordent i intensificant per a retenir el colorant cristall violeta, el iode penetra en les cèl·lules i forma un complex insoluble en les solucions aquoses amb cristall violeta. Forma un compost insoluble amb el colorant i determina la seva fixació de les bateries.

  • Tornar a rentar l'excés de colorant amb aigua inclinant lleugerament el portaobjectes.

  • Passat el minut d'haver actuat el mordent, el frotis es decolora amb alcohol-acetona, (7:3 v/v) daurant 15 o 30 segons, tot i que si la tinció prèvia no ha estat gaire intensa el temps ha de ser inferior o bé s'endurà el colorant blau de les grampositiu, segui amb la mateixa solució fins que no s'escuri més liquid blau, movent el portaobjectes suaument. Amb aquesta solució decolora els microorganismes que no tenen fixat el colorant cristall de violeta , que surt a través del porus de la paret bacteriana.

  • Es torna a decantar el portaobjectes i rentar el frotis amb aigua per treure el decolorant, inclinat el portaobjectes, i esperea que s'eixugui el portaobjectes.



  • Un cop assecat el portaobjectes, procedim a tenyir novament però aquesta vegada amb safirina, cobrir amb solució de fucsina i deixar-lo actuar durant un minut. Aquest colorant tenyeix de color vermell-rosat, els microorganismes que no havien sigut capaços de retenir el colorant cristall- violeta, pot ser que tenyeixin de color vermell rosat.

  • Passat el minut corresponent, es precedeix a esbandir el portaobjectes amb aigua, i es deixa per assecar en l'aire lliure.

  • De manera , ja tindrem preparat el frotis per poder observar-ho en el microscopi.

  • Un cop fet tot aquests procediments ja està disposat la preparació per poder observar-ho, a 1000 augments amb l'objectiu d'immersió, però primer l'observarem amb sense col·locar l'oli d'immersió per poder comprovar la diferencià que es pot observar durant l'observació. Un cop visualitzat sense oli, li afegirem a la mostra una goteta d'oli d'immersió, i ens adonarem gracies al oli d'immersió s'eliminen casi completament la desviació dels raig de la llum i augmenta considerablement la eficaica del objectiu del microscopi.

      1. Resultats i discussió


Segons quina sigui la finalitat s'empara una tinció determinada, així podem parlar de ;


  • Tinció simple, és un mètode què s'utilitzà un sol tipus de colorant.

  • Tinció composta, és un mode d'emparar més d'un colorant.

  • Tinció diferencial, tincions que s'usen per diferenciar de manera més explicita els microorganismes.



Les tincions de gram negatiu són aquells bacteris què no es tenyeixen de color blau o violeta, i ho fa d'un color rosat, aquesta característica està lligada a la estructura de l'embolcall cel·lular, i no reflexa el tipus natural del bacteri. Els bacteris de gram positiu són els bacteris que retenen el cristall violeta durant el procés de tinció gram.


La tinció de Gram són per a diversos tipus de cèl·lules de composició química diferent, i per recció desigual en front a una tinció, estan constituïdes per dues etapes;


  • Tinció primària (tinció si mple)

  • Tinció de contrast s'aplica un altre colorant , revelen les cèl·lules no tenyides.


La solució de Lugol és una dissolució de iode molecular i iodur potàssic en aigua destil·lada, aquesta dissolució s'utilitza com a antisèptic i desinfectant. És emprat en la tinció de Gram per retenir el colorant cristall violeta, el I2 penetra en les cèl·lules i forma un complex insoluble en solució aquosa.


Moltes espècies de bacteries de gramnegatiu causen patologies: Els cocs causen la gonorrea (Neisseria gonorrhoeae), meningitis ( Neisseria miningitidis).

Entre els bacteris de grampositiu que causen patologies en trobem; Enterococcus( patologia urinària orgànica), Staphylococcus auerus (contaminació urinària per via hematogenea).


Es col·loca una gota de solució fisiològica salina per poder diluir la colònia que esta damunt del portaobjectes el que volem estendre la colònia.


Al final quan s'ha observat en el microscopi s'ha pogut comprovar que els bacteris estaven tenyits de color blau, per la tinció gram que previament s'ha fet, això vol dir què la pared cel·lular composta per una gruixuda capa de peptidoglicà.


S'ha han pogut observar coccus, que tenen una forma esfèrica que apareixen aïllats i dispersos en la divisió cel·lular. També s'ha pogut observar diplococcus, tenen una forma esfèrica que apareixen per parells. A més a més s'ha pogut observar unes cadenes llargues, anomenades Estreptococcus.

També s'han pogut observar bacteris de forma irregular.

Aquesta observació s'ha fet en el microscopi a 160/0,17.


6.Conclusions


S'ha de tenir en comte alhora de fer la preparació ja que si el portaobjectes no està net pot provocar que el resultat final no sigui correcte.

A més a més s'ha de tenir en compte que la solució fisiològica salina sigui una gota no massa gran, ja que trigara més en assecar . També esta alerta quan s'esta donant calor de la flama del bec Bunsen no apropar-se molt ja que es molt cremar amb molta facilitat la preparació, i llavors s'hauria de tornar de fer el procediment des del començament.


Alhora de treure l'excés de colorant amb aigua és aconsellable que caigui l'aigua a sobre la part superior de làmina que no conte la mostra, així conservem la mostra de no espatllar la mostra.


Es aconsellable col·locar una goteta d'oli d'immersió, gracies a aquest oli es pot observar els microorganismes amb més claredat.





7.Bibliografia


dilluns, 13 de desembre del 2010



B1

B2

B6

B12

B3

C

B5

B8


Llevat de cervesa

5mg/100gr

3mg/100gr

5mg/100gr

-

36mg/100gr

-

15mg/100gr

90nanomicras/100gr


Pernil salat

0,37mg/100gr

0,25mg/100gr

0,41mg/100gr

-

-

0mg/100gr

-

-


Nous

0,34mg/100gr

0,12mg/100gr

0,87mg/100gr

-

1mg/100gr

2,6mg/100gr

2,1mg/100gr

-


Arròs blanc

0,02mg/100gr

0,01mg/100gr

0,09

-

0,9mg/100gr

-

0,39mg/100gr

-


Ronyo de porc

0,34mg/100gr

1,8mg/100gr

0,55mg/100gr

15nanomicras/100gr

8,35mg/100gr

16mg/100gr

3,13mg/100gr

-


Ous

0,1mg/100gr

0,33mg/100gr

0,11mg/100gr

2,1nanomicras/100gr

0,08mg/100gr

-

1,77mg/100gr

0,02mg/100gr


Llet

0,05mg/100gr

0,17mg/100gr

0,02mg/100gr

0,18nanomicras/100gr

0,9mg/100gr

1mg/100gr

0,35mg/100gr

-


Patata

0,09mg/100gr

0,03mg/100gr

0,19mg/100gr

-

1mg/100gr

9mg/100gr

0,24mg/100gr

-


Formatge

0,04mg/100gr

0,3mg/100gr

0,8mg/100gr

1,5nanomicras/100gr

6,7mg/100gr

-

-

-


Fetge de vedella

0,3mg/100gr

3mg/100gr

2mg/100gr

46,8nanomicras/100gr

15mg/100gr

30mg/100gr

3,01mg/100gr

-


Taula 1


Cereals Kellogg's, per ració 30gr i CDR adult (mg/dia)



VITAMINE-S


Fruites del bosc

Special K Classic

All Brans Plus

Mueslis

Choco Krispies Orignal

Niacina

B3

mg/100gr

13,1

30,1

11,3

10,1

15

%CDR ració

26,21

66,2

22,6

20,2

30

B6

mg/100gr

2,9

3,3

1,3

1,1

1,7

%CDR ració

43,5

49,5

19,5

16,5

25,5

RIBOFLAVI-NA B2

mg/100gr

2,3

2,7

1

0,9

1,3

%CDR ració

46

54

20

18

26

TIAMINA

N B1

mg/100gr

1

2,3

0,9

0,8

1,2

%CDR ració

23,07

53,07

20,76

18,46

27,69

Taula 1



divendres, 3 de desembre del 2010

Pràctica nº4

Pràctica nº4



  • Objectiu


Han de traspassar el medi de cultiu què està en l'ampolla de pirex a la placa de petri esterilitzada.

Mostrejar una àrea del laboratori per a què desprès és pugui estendre en el medi de cultiu.


  • Introducció


Gràcies a la elaboració del medi de cultiu admetran el desenvolupament de microorganismes que aspiren a reconèixer en la mostra del producte, al distribuir al medi en la placa de petri esterilitzat, amb la mostra d'una superfície a partir d'una operació anomenada dosificació o emplecat.

Ha d'estar el medi en la incubadora fins què els microorganismes siguin viables.

El contagi d'una àrea de treball s'examinà per tal de precisar la categoria de l'esterilitat què hi ha en aquell medi.


  • Material


  1. Medi de cultiu TSA o AN preparat

  2. Hisop de cotó

  3. pH-metre

  4. Microones

  5. Bany termostàtic

  6. Campana de flux laminar

  7. Estufa

  8. Plaques de petri

  9. Solució salina fisiològica

  10. Full de paper

  11. Regle graduat

  12. Llapis

  13. Tisores


  • Procediment


Per poder començar amb l'emplacat un medi de cultiu i fer el control microbiològic de la superfície han de tenir a la taula de treball tot el material què prèviament s'ha descrit abans què s'haurà d'emparar.

Per realitzar aquest treball s'ha de tenir molt en compte una serie de normes;

  • Rentar les mans

  • Minimitzar el risc de contaminació( tancant les finestres...)

Trauran el medi de cultiu de la nevera, què prèviament havien preparat en l'última pràctica, deixaran el medi de cultiu a temperatura ambient, uns deu minuts aproximadament. Posteriorment per a liquar el medi utilitzaran el microones per a fondre el medi sòlid. S'ha d'evitar realitzar-ho per a un període excessiu a de ser un interval molt curt aproximadament d'un a dos minuts, a la veda durant aquest proces s'ha d'anar comprovant l'estat de fusió parcial, observant-lo al contrallum prèviament tret del microones.

Un cop confirmat que el medi de cultiu esterilitzat està completament liquat el deixaran temperar, mantenint-lo a un estat inferior a la de seva fusió, a uns 47-+2ºC dins del bany termostàtic.

De m'entres tan dibuixaran en un full de paper una superfície de 100cm2 i desprès en altre quadrant més extern , tenint en compte què cada aresta ha de tenir una longitud de 10cm, un cop dibuixat, el retallaran amb unes tisores en la seva perifèria però buidada. El quadrant que han realitzat s'utilitzarà com un model per a realitzar el mostreig.


Desprès s'ha de mesurar el pH-metre del medi de cultiu liquat, però abans de mesurar s'ha de calibrar el pH-metre amb l'ajuda de la solució tampó al menys s'ha de comprovar amb dues solucions àcid, bàsic o neutre, tenint en compte què no és poden barrejar ja què si no és espatlla el patró. S'ha de netejar la sonda del pH-metre amb aigua destil·lada per a què l'agar és quedi enganxat.Abans de comprovar el pH del medi és necessari comprovar-ho en el pot del medi quin és el seu pH 7,2.


A l'interior de la campana de flux laminar, un cop en posat en marxa és col·loquen les plaques de petri estèril a la superfície del treball del flux laminar, posteriorment és preparen les plaques de petri amb la tapa lleugerament obrint-ho per tal de abocar el medi.

És dosifica manualment, en cada una de les plaques, abocant uns 20mL fins a arrasar la superfície, un cop afegit el medi de cultiu en la placa de petri deuran d'anar en compte de minimitzar encara més el risc de contaminació, ja què no esterilitzaran el medi. Desprès d'arrasar la placa de petri no s'ha de tapar fins que passi d'un estat liquid a sòlid no és generi més vapor d'aigua.

Un cop què estigui el medi sòlid és tapa amb la tapa, colcant-la a sobre d'un altre què estigui buida amb la part contenidor en la part inferior. La columna de placa de petri es permet que vagi creixent tot i així han de tenir en compte que cal garantir que no posin en perill la seva estabilitat, passa quan n'hi ha deu o més apilades.


Hi s'ha de deixar que el medi de cultiu és solidifiqui. Posteriorment s'ha de escriure amb un marcador a sobre de la plac de petri el que cadascun a preparat amb la data nom i un numero de l'un al dotze, que correspon a l'ordre en que ho han emplacat el medi de cultiu.

Al cap d'una estona quan el medi estigui solidificat, ja es podra sembra passos a seguir;


  • Obrir el precinte de l'hisop (estèril),han d'annar amb alerta de no contaminar la torunda de cotó de l'extrem de l'hisóp evitant que toqui cap superfície.

  • Humitejar amb el medi de cultiu TSAque han dosificat en la placa de petri, el cotó terminal de l'hisop per a què d'auesta manera es facilitarà la captació dels microorganismes de la superfície que es mostregi

  • Amb la mostra de la superfície escollida delimitada pel marc de paper faran un escombrat amb l'extrem dels cotóns de l'hisop humitejat

  • Sembra la placa de petri realitzant un moviment en zig-zag per tota la superfície del medi de cultiu

S'incuba a l'estufa (amb una temperatura de 37ºC la placa de petri que han sembrat sobretot tenint en compte que el medi ha de estar avall.


  • Resultat


Una de la superfície què van emplacar va ser el teclat d'un ordinador del laboratori de microobiològia.

En aquesta placa de petri podem observar estropilooccocus averius( perquè són de color blanc).

Per enumerar els fongs és aconsellable no obrir la tapa de la placa de petri, ja què pot contenir fongs hi és perjudicial tenir en contacte.

En aquest medi poden observar fongs de color gorc, amb dieferents tipus de tamany, hi ha n fongs què és poden observar a ull nú, però d'altres què és necessari l'utilització de la lupa binocular.

Podem observar 16 fongs de color groc d'un tamany més o menys mitjà 3mm.


16Colònies = 0'16ufc/cm2

100cm2 mostrejats

Per cada 100cm2 de la mostra delimitada pel qudrant del paper, podem observar 0,16ufc/cm2.

També hi han unes 20 colonies de color blanc d'un tamany més petit que l'anterior d'uns 2mm.

20 Colònies = 0.2ufc/cm2

100cm2 mostrejats

Per cada 100cm2 de la mostra delimitada pel qudrant del paper, podem observar 0,2ufc/cm2.

Per últim hi ha 8 colònies d'un color groguenc, encara què sembla que sigui de color taronja, però al estar a sota del medi de cultiu s'han barrejat una mica els colors.

8Colònies = 0,8ufc/cm2

100cm2mostrejats

Per cada 100cm2 de la mostra delimitada pel qudrant del paper, podem observar 0,8ufc/cm2.



Una de la superfície què van emplacar va ser unes mans netes d'un company de classe de microobiologia.

En aquest mostreig podien observar una colònia gran de color blanc.

Per cada 100cm2 de la mostra delimitada pel qudrant del paper, podem observar 0,1ufc/cm2.

També n'hi han 75 colònies d'un tamany mitjà de color groc . Per tant de cada 100cm2 de la mostra delimitada pel qudrant del paper, podem observar 0,75ufc/cm2.

Hi la resta de les colònies tenen una mida milimètrica, hi han aproximadament 115 colònies. Què de cada 100cm2 de la mostra delimitada pel qudrant del paper, podem observar 0,115ufc/cm2.


  • Discusisó


L'estat del medi de cultiu què és troba quan és treu de la nevera és un esta sòlid, hi el tipus de medi de cultiu què van utilitzar per preparar el medi era TSA, és va preparar una setmana abans amb aigua destil·lada i el medi fins ha homogeneïtzar-ho i posteriorment és va ficar al autoclau.


Per considerar que efectivament la campana de flux laminar està perfectament en funcionament, s'ha de comprovar si els botons està en on.

Les plaques de petri han d'estar cap aval en l'interior de l'estufa d'incubació ja què és troben a un estat líquid hi és pot derramar ja que està arrasat la placa de petri.

Han de sembrar a sobre del medi de cultiu ja que sinó no podrien créixer els microorganismes.

No és aconsellable apilar més deu plaques de petri ja què posa en perill la seva estabilitat.

Un hisotop s'utilitza per a superfícies planes i còncaves.

Un medi de cultiu preparat poden estar en una ampolla de pirex durant setmanes dintre de la nevera , però dins d'una placa de petri sinó volen què apareixien diferents tipus de colònies és aconsellable no guardar-ho més de quatre dies.

Sí hagués donat el cas de que el medi de cultiu què han preparat el seu pH no hagués sigut el mateix de la què indica, és tornaria de fer de nou ja què aquell medi està malbé.

En aquest cas el mostreig que van fer en teclat de l'ordinador i d'unes mans netes és pot comprovar què el recompte microbià no sobrepassa de 200 colònies això vol dir què aquestes superfícies estan més o menys netes encara què hi presenten diferents tipus de microorganismes.


  • Conclusions


Per poguer emplacar en un medi de cultiu per a fer posteriorment un control microbiològic s'ha de tenir en compte que és necessari treballar en un lloc desinfectat, estèril, evitar qualsevol tipus de contagi.

A més alhora de liquar el medi què prèviament va estar en la nevera no és aconsellable què estigui més de 2 minuts al microones, hi desprès s'ha de deixar una estona a temperatura ambient.

També s'ha de dibuixar en paper en una superfície de 100cm2 què s'utilitzara com a motllo per a realitzar el mostreig.

S'ha de mesurar el pH del medi i comprovar si és el correcte, prèviament calibrant el pH-metre almenys s'ha de comprovar amb dos patrons.

Un cop fet tots aquest passos a l'interior de la campana de flux laminar s'introduiex la placa de petri hi es dosifica fins a saciar-lo no és pot cobrir més de 20ml, desprès s'ha deixar què és solidifiqui el medi.

Amb un hisop s´humiteja una mica amb el medi per facilitar la captació dels micrioorganismes hi ès sembren en la placa de petri en forma de zig-zag.

Darera de la placa amb un marcador s'escriu la data, el lloc de la mostra, i el nom de l'individu què a relitzat, hi s'incuba a l'estufa a 37ºC, amb el sembrat cap avall.


  • Bibliografia

  • Apunts de classe

  • Enciclopedia catalana